ORIGINAL PAPER
The fungal community colonizing broad bean seeds depending on the biological protection
More details
Hide details
1
Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołł_taja w Krakowie, Katedra Ochrony Środowiska Rolniczego Al. Mickiewicza 21, 31-120 Kraków
Journal of Research and Applications in Agricultural Engineering 2013;58(3):147-154
KEYWORDS
ABSTRACT
The study focused on broad bean, White Windsor cv., from a replicated field experiment conducted in 2010-2012, in which
different variants of biological protection were used: Polyversum WP, Bioczos BR and Biosept 33 SL biopreparations. Altogether
2053 fungi colonies were obtained from broad bean seeds. Irrespective of applied protection, the most numerously
isolated fungi: Alternaria alternata – 21.7%, came from the following genera Fusarium – 19.6% and Penicillium – 14.4%
and species of Botrytis cinerea – 10.4%, Epicoccum purpurascens – 9.4% of isolates. Seeds from biologically protected
treatments were characterized by quantitatively poorer fungal community (approximately 473 colonies) in comparison with
the control (633). A major proportion of pathogenic species, 53.4% was found in the seeds protected with Polyversum WP
formulation and in the control, among which the most frequently isolated were fungi of the genus Fusarium, B. cinerea,
Epicoccum purpurascens. Foliar application: 2x and 3xBioczos BR and 1xBiosept 33 SL limited presence of pathogenic
fungi (45.9%, 46.9%), but favored colonization of seeds by saprobionts represented by A. alternata, Penicillium,
C. herbarum.
REFERENCES (27)
1.
Sadowski C., Łukanowski A.: Z badań nad zdrowotnością pszenicy ozimej uprawianej w systemie ekologicznym, integrowanym, konwencjonalnym i monokulturze w latach 1999-2004. Prog. Plant Protect./ Post. Ochr. Rośl., 2005, 45 (1): 423-425.
2.
Watanabe I., Kakishima M., Adachi Y., Nakajima H.: Potential mycotoxin productivity of Alternaria alternata isolated from garden trees. Mycotoxins, 2007, 57 (1): 3-9.
3.
Király Z., Klement Z., Solymosy F., Voros J.: Fitopatologia wybór metod badawczych. PWRiL, Warszawa, 1977, 459 ss.
4.
Pidopliczko H. M.: Griby-parazity kulturnych rastienij. Tom 3. Naukowaja Dumka, 1978, 230 ss.
5.
Domsch K.H., Gams W., Anderson T.H.: Compendium of Soil Fungi. Academic Press, (London), 1980, 619 pp.
6.
Cook R. J.: Fusarium: Diseases, biology and taxonomy. The Pennsylv. St. Univ. Press., Park and London, 1981.
7.
Nelson P.E., Toussoun T.A., Marasas W.F.O.: Fusarium species. The Pennsylvania State University Press. University Park and London, 1983, 193 pp.
8.
Kwaśna H., Chełkowski J., Zajkowski P.: Flora Polska, Grzyby (Mycota), tom XXII, Sierpik (Fusarium). PAN, Warszawa-Kraków, 1991, 137 ss.
9.
Marcinkowska J.: Oznaczanie Rodzajów Grzybów Ważnych w Patologii Roślin. Fundacja Rozwój SGGW, 2003, 328 ss.
10.
Gleń K., Gospodarek J.: Mikroflora nasion bobu (Vicia faba L. ssp. major) uprawianego w warunkach gleby skażonej metalami ciężkimi. Prog. Plant Protect./Post. Ochr. Rośl., 2009, 49 (3): 1260-1263.
11.
Gleń K., Boligłowa E., Gospodarek J.: Wpływ zapraw nasiennych na zdrowotność nasion bobu. Prog. Plant Protect./Post. Ochr. Rośl., 2011, 51 (4): 1628-1632.
12.
Gleń K., Boligłowa E., Gospodarek J.: Wpływ stopnia uszkodzenia nasion bobu przez Bruchus rufimanus Boh. Na mikoflorę w warunkach uprawy współrzędnej. Prog. Plant Protect./Post. Ochr. Rośl., 2011, 51 (4): 1525-1529.
13.
Filipowicz A., Wagner A.: Mikoflora nasion łubinu żółtego (Lupinus luteus L.) uprawianego na terenie Polski. Biul. IHAR, 1987, 163: 146-156.
14.
Filipowicz A.: Mikoflora nasion łubinu wąskolistnego (Lupinus angustifolius L.) i łubinu białego (L. albus L.) uprawianego w Polsce. Hod. Rośl. Nasien., 1989, 5-6: 11-14.
15.
Khan B.A., Saad A.T.: Seed health testing of broad beans. Pakistan, J. Agric. Res., 1993, 14 (2,3): 227-232.
16.
Nowicki B.: Patogeniczne grzyby zasiedlające nasiona łubinu wąskolistnego. Acta Agrobot., 1995, 48 (2): 59-64.
17.
Kurowski T.P., Bieniaszewski T.: Grzyby izolowane z nasion łubinu żółtego, ze szczególnym uwzglęnieniem Colletotrichum gloeosporioides w zależności od okresu przechowywania materiału siewnego. Zesz. Nauk. Akad. Rol. Wroc. 427, Roln., 2001, 82: 195-204.
18.
Okorski A., Majchrzak B.: Grzyby zasiedlające nasiona grochu siewnego po zastosowaniu preparatu mikrobiologicznego EM 1. Prog. Plant Protect./Post. Ochr. Roślin, 2008, 48 (4): 1314-1318.
19.
Al-Abdalall A.H.A.: Pathogenicity of fungi associated with leguminous seeds in the Eastern kingdom of Saudi Arabia. Afr. J. Agric. Res., 2010, 5 (10), 1117-1126.
20.
J_dryczka E., Lewartowska E., Frencel I.: Wpływ środowiska na stopień odporności grochu siewnego i łubinu żółtego na fuzariozę (Fusarium spp.). Mat. Symp. Biotyczne środowisko uprawne a zagrożenie chorobowe roślin. Olsztyn, 1993, 213-220.
21.
Filipowicz A.: Badania mikroflory nasion grochu siewnego (Pisum sativum L.) ze szczególnym uwzględnieniem grzybów z rodzaju Ascochyta i Fusarium. Rocz. Nauk Rol., 1976, E 5 (2), 85-119.
22.
Skinder Z., Lemańczyk G., Wilczewski E.: Wartość wybranych roślin motylkowatych uprawianych w międzyplonie ścierniskowym na glebie lekkiej. Cz. I. Wydajność biomasy i zdrowotność roślin. Acta Sci. Pol., Agricultura, 2007, 6 (1): 23-33.
23.
Wójcik U.: Grzyby zasiedlajace nasiona seradeli (Ornithopus sativus Brot.) uprawianej z roślinami podporowymi i w siewie czystym. Mat. Symp. Biotyczne środowisko a zagrożenie chorobowe roślin. Olsztyn, 1993, 419-426.
24.
Iram S., Ahmad I.: Analysis of variation in Alternaria alternata by pathogenicity and RAPD study. Polish J. Microbiol., 54 (1): 13-19, 2005.
25.
Kowalczyk S., Maciorowski R.: Grzyby zasiedlające ziarno krótkosłomego owsa nieoplewionego. Biul. IHAR, 2006, 239: 165-171.
26.
Ogórek R., Pl_sowska E., Kalinowska K.: Charakterystyka i taksonomia grzybów z rodzaju Alternaria. Mikologia lekarska, 1 2011, 8 (3): 150-155.
27.
Cwalina-Ambroziak B., Kurowski T.P.: Kształtowanie się zbiorowiska grzybów izolowanych z nasion łubinu żółtego (Lupinus luteus L.) pod wpływem okresu przechowywania. Acta Agrobotanica, 2005, Vol. 58, z. 2: 407-416.